Respuesta en el establecimiento y regeneración in vitro de rocoto (Capsicum pubescens Ruiz & Pav.)
DOI:
https://doi.org/10.32911/as.2021.v14.n1.745Keywords:
Rocoto, disinfection, regeneration, organogenesis, epicotylAbstract
The rocoto (Capsicum pubescens Ruiz & Pav.) is a nightshade with a center of origin in Peru, with great gastronomic value. It is affected by diseases that limit its development, spread by infected seeds. The in vitro culture of plant tissues allows the propagation of elite genotypes with the availability of pathogen-free plant material. The objective was to determine the in vitro response of hot pepper in the establishment of seeds and regeneration from terminal buds. Hot pepper seeds were used in different treatments with sodium hypochlorite. Leaves and roots of germinated rocotts were removed in vitro, leaving epicotyl with terminal buds and transferred to culture media with different concentrations of salts and MS vitamins for the in vitro regeneration phase, the organogenic response and oxidation were evaluated. In the establishment of hot pepper seeds, 100% disinfection was obtained using ethanol (70%) and sodium hypochlorite (2%) for 15 minutes, in the regeneration phase the culture medium with salts and MS vitamins at 100% concentration allowed to obtain 19.8% of organogenic response. The protocol for the in vitro establishment of hot pepper seeds was established and a low organogenic response was determined from terminal buds under in vitro conditions.
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References
Argüelles, A., Hernández, A., Cortez, A. y Díaz, H. 2020. Callogénesis in vitro de paprika (Capsicum annuum L.) cv. Papri King a partir de tallos. Big Bang Faustiniano (1), 4-7. DOI: 10.51431/bbf.v9i1.585
Benson, E. 2000. Special symposium: In vitro plant recalcitrance: An introduction. In vitro Cell Dev. Bioi-Piant. 36, 141-148. DOI: 10.1007/s11627-000-0029-z
Cetz, J. 2005. Micropropagación de chile dulce (Capsicum annuum L. var. Najera.) y chile habanero (Capsicum chinense Jacq.) con miras al mejoramiento genético del cultivo. Tesis de Maestría. Centro Agronómico Tropical de Investigación y Enseñanza. Turrialba, Costa Rica.
Cuya, E. y Delgado, J. 2013. Manejo integrado del cultivo de rocoto. UNALM, 39.
Gayathri, N., Gopalakrishnan, M. y Sekar, T. 2015. In vitro micropropagation of Capsicum Chinense Jacq. (Naga King Chili) . Asian Journal of Plant Science and Research, 13-18. < DOI: 10.7324/JABB.2015.3106>
Gutierrez-Rosati, A. y Vega, B. 2016. Micropropagacion in vitro de “ají mirasol “, Capsicum Baccatum var. Pendulum. The Biologist, 15(1), 171-181.
Hernández, A., Argüelles, A., Cortez, A. y Díaz, H. 2020. Efecto de la concentración de 2,4-diclorofenoxiacético en la inducción de callos in vitro utilizando cotiledones de rocoto (Capsicum pubescens Ruiz & Pav.). The Biologist 17(2), 327-334.
Hernández, A., Pineda, A. y Díaz, H. 2019. Efecto de la luz y del ácido giberélico en la germinación in vitro de Capsicum annuum L. cv. ‘Papri King’. Biotecnología Vegetal, 19(3), 165-170.
Hernández, A., Pineda, A., Rojas, J. y Díaz, H. 2021. Regeneración in vitro de arnaucho (Capsicum chinense Jacq.) a partir de yemas apicales. Manglar 18(1), 71-75.
Hernández, A., Pineda, A. y Noriega-Córdova, H. 2019. Aislamiento e identificación de Fusarium oxysporum obtenidos de zonas productoras de “ají paprika” Capsicum annumm L. (Solanaceae) en el distrito de Barranca, Perú. Arnaldoa 26(2), 689-698.
Izquierdo, H., Alcaraz, L. y Rodríguez, M. 2017. Micropropagación de chiltepín (Capsicum annuum L. cv. ‘glabriusculum’) mediante el empleo de una oligosacarina de origen péctico. Acta Universitaria 27(5), 34-43.
León, J. 1968. Fund. Botánicos de los cultivos tropicales. IICA Costa Rica.
Mateos, P.F. 2004. Control de las poblaciones microbianas: Esterilización y desinfección. Departamento de Microbiología y Genética. Universidad de Salamanca. Salamanca, España.
Moroto, J. 2002. Horticultura herbácea especial. 5ª. ed. Ediciones Mundi-Prensa.
Murashige, T. y Skoog, F. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue culture. Physiology Plant. 15, 473-497.
Ochoa, N. y Ramírez, R. 2001. In vitro chili pepper biotechnology. In vitro Cell. Dev. Biol. 37, 701-729.
Orlinska, M. y Nowaczyk, P. 2015. In vitro plant regeneration of 4 Capsicum spp. genotypes using different explant types. Turkish Journal of Biology, 60-68.
Sanatombi, K. y Sharma, G.J. 2007. Micropropagation of Capsicum annuum L. Notulae Botanicae Horti Agrobotanici Cluj-Napoca, 35, 57-64.
Swamy, S., Krupakar, A., Chandran, D.S. y Koshy, E.P. 2014. Direct regeneration protocols of five Capsicum annuum L. varieties. African Journal o f Biotechnology, 13, 307-312.
Topuz, A. y Ozdemir, F. 2004. Influence of gamma irradiation and storage on the capsaicinoids of sun-dried and dehydrated paprika. Food Chemistry, 509-515.
Valdez, I. 2017. Caracterización fenotípica de quince accesiones de germoplasma de rocoto (Capsicum pubescens Ruiz & Pavón.) en la estación INIA Santa Rita Arequipa. Tesis de Ingeniera. Universidad Nacional de San Agustín, Arequipa. Perú.
Vallejo-Gutiérrez, A., Mejía-Carranza, J., García-Velasco, R. y Ramírez-Gerardo, M. 2019. Respuesta de genotipos de Capsicum pubescens al daño ocasionado por el complejo fúngico de la marchitez. Revista Mexicana de Fitopatología 37(1), 50-70.
Young-Joon, S. L. 1996. Capsaicin in hot chili pepper: Carcinogen, co-carcinogen or anticarcinogen? Food and chemical toxicology, 313-316.
